Kami akan menerapkan ilmu pengetahuan anugrah Allah SWT untuk menyuburkan dan meningkatkan produksi tanah pertanian, meremediasi tanah tercemar minyak, reklamasi lahan bekas tambang, dan pengolahan limbah cair industri Anda.

Rabu, 18 Mei 2011

BAKTERI NITRIFIKASI DARI 14 LOKASI DI KAB.BOGOR


ISOLASI DAN SELEKSI BAKTERI PENITRIFIKASI
 DARI 14 SAMPEL TANAH DI KABUPATEN BOGOR
Thesis
YULY RATNA PRATIWI.

Dibimbing oleh :
Prof.DR. Ir. ISWANDI ANAS. MSc*, DR. RAHAYU WIDYASTUTI, MSc, dan Dra. ROSMIMIK, MSi**

*)      Disamping sebagai seorang Guru Besar, beliau adalah juga 
         Konsultan Utama CV.MARROS LESTARI
**).  Disamping sebagai seorang peneliti di Lembaga Penelitian Pertanian ,
         beliau adalah juga Tenaga Ahli  CV.MARROS LESTARI.
Silahkan lihat Company Profile CV.MARRSOS LESTARI di : 
http://ifile.it/o46ljqx/CV-MARROS%20PROFILE-2011v1.pdf
 
RINGKASAN
Limbah berupa limbah domestik maupun limbah cair industri yang umumnya dibuang ke kawasan perairan. Limbah tersebut mengandung berbagai unsur kimiawi, diantaranya adalah amonium (NH4+). Amonium merupakan senyawa nitrogen yang pada kadar tinggi bersifat racun. Salah satu metode yang digunakan untuk mengatasi akumulasi amonium ini yaitu proses nitrifikasi. Proses ini dilakukan dengan menggunakan bantuan aktivitas bakteri penitrifikasi. Bakteri penitrifikasi yang umum digunakan adalah bakteri penitrifikasi yang berasal dari genus Nitrosomonas sp. dan Nitrobacter sp. Bakteri Genus Nitrosomonas sp. merupakan bakteri yang mampu mengoksidasi amonium menjadi nitrit, sedangkan Nitrobacter sp. mampu mengoksidasi nitrit tersebut menjadi nitrat.
Penelitian ini bertujuan untuk melakukan isolasi terhadap bakteri pengoksidasi amonium (Nitrosomonas sp.) dan bakteri pengoksidasi nitrit (Nitrobacter sp.) dengan menggunakan media spesifik untuk masing-masing bakteri, serta melakukan seleksi kemampuan bakteri tersebut dalam menurunkan konsentrasi amonium dan meningkatkan konsentrasi nitrat. Bahan yang digunakan adalah sampel tanah yang berada di sekitar kandang ternak (sapi, kerbau, kambing, dan ayam) sebagai sumber mikroba penitrifikasi dari 14 lokasi di Kabupaten Bogor. Isolasi kedua kelompok bakteri tersebut dilakukan dengan metode enrichment culture dengan menggunakan media spesifik yang dikembangkan oleh Verstraete (1981, dalam Iswandi, 1989) dengan tiga taraf konsentrasi (NH4)2SO4, yaitu 250 ppm, 500 ppm, dan 1000 ppm (NH4)2SO4. Penetapan konsentrasi amonium dan nitrat dilakukan dengan menggunakan Spectrophotometer.
Aktivitas bakteri penitrifikasi paling optimum terjadi pada media spesifik dengan taraf konsentrasi 500 ppm (NH4)2SO4 dan pada hari ke-4 setelah inkubasi. Isolat “Nitrosomonas” yang mampu menurunkan konsentrasi amonium dengan cepat pada konsentrasi tersebut secara berurutan dari yang paling cepat adalah isolat NSsp1, NSkm1, NSkm2, NSkm3, dan NSsp3, sedangkan isolat “Nitrobacter” yang paling cepat meningkatkan konsentrasi nitrat secara berurutan dari yang paling cepat adalah NBsp1, NBkb1, NBam, NBsp5, dan NBkm4. Isolat-isolat tersebut kemudian dipasangkan sehingga diperoleh 25 pasang isolat yang juga ditetapkan kemampuannya dalam menurunkan konsentrasi amonium sekaligus meningkatkan konsentrasi nitrat. Berdasarkan hasil penetapan, diperoleh 5 pasangan isolat yang memiliki kemampuan paling cepat dalam menurunkan konsentrasi amonium dan meningkatkan konsentrasi nitrat adalah pasangan isolat NSsp1-NBsp5, NSsp1-NBkm4, NSkm2-NBkb1, NSkm3-NBkb1, dan NSsp3-NBsp5.

Kata Kunci: Nitrifikasi, Bakteri Penitrifikasi, Bakteri Pengoksidasi Amonium, Bakteri Pengoksidasi Nitrit

II. TINJAUAN PUSTAKA

Definisi nitrifikasi di dalam tanah secara umum adalah pengubahan nitrogen secara biologis di dalam tanah dari bentuk tereduksi menjadi bentuk yang lebih teroksidasi atau dengan kata lain oksidasi biologis garam amonium dalam tanah menjadi nitrit dan selanjutnya oksidasi nitrit menjadi nitrat (Rao, 1994).
Oksidasi amonia ke nitrat dapat diselesaikan dengan 3 bentuk proses, yaitu proses kimiawi (chemical), proses physicochemical, dan proses biologis (biological chemical) yang merupakan proses yang amat penting. Mengenai proses biologis dari amonia menjadi nitrat sesungguhnya berlangsung melalui 2 tingkatan, yang selanjutnya dikenal sebagai proses nitritasi dan nitratasi (Sutedjo et al., 1991).
Menurut Spotte (1979), nitrifikasi adalah proses oksidasi amonia menjadi nitrit dan kemudian menjadi nitrat secara biologis oleh bakteri autotrof, umumnya berasal dari genus Nitrosomonas sp. dan Nitrobacter sp. yang merupakan genus yang terpenting dari bakteri autotrof. Bakteri autotrof yang melakukan proses nitrifikasi membutuhkan senyawa anorganik sebagai sumber energi dan karbondioksida sebagai sumber karbon.
Nitrifikasi melalui dua tahapan reaksi, yaitu tahap pertama oksidasi amonium menjadi nitrit yang dilakukan oleh mikroba pengoksidasi amonium (Nitrosomonas sp.), pada tahap kedua oksidasi nitrit menjadi nitrat oleh mikroba pengoksidasi nitrit (Nitrobacter sp.). 

Dinamika Nitrogen-Nitrobacter-Nitrosomonas
Faktor-faktor yang mempengaruhi proses nitrifikasi adalah jumlah NH4+ dalam tanah, populasi mikrob, reaksi tanah, aerasi tanah, kelembaban tanah, dan temperatur. Amonium (NH4+) dapat berasal dari proses dekomposisi bahan organik. Apabila perbandingan C/N dari satu bahan organik tinggi, maka NH4+ yang dihasilkan dari proses dekomposisi akan sebanding dengan pertambahan populasi mikroba Penelitian-penelitian yang dilakukan Universitas Iowa membuktikan bahwa apabila faktor-faktor yang berpengaruh terhadap proses nitrifikasi pada dua tempat yang sama, proses tersebut tetap terhambat jalannya. Ternyata hambatan ini disebabkan oleh populasi mikroba yang berbeda di kedua tempat. Proses nitrifikasi biasanya berlangsung antara pH 5.5 sampai pH 10 dengan pH optimum sekitar 8.5, tetapi juga diketahui bahwa nitrat dapat dihasilkan pada tanah dengan pH 4.5 dan terdapat laporan bahwa proses nitrifikasi terjadi pada padang rumput dengan pH 3.8. Nitrifikasi berlangsung lebih lambat dibandingkan dengan pupuk amonium sebab ada pengaruh NH3 bebas terhadap kegiatan mikroorganisme (Leiwakabessy et al., 2003).  
Sedangkan menurut Paul dan Clark (1996); Jenie dan Rahayu (2004), faktor-faktor yang mempengaruhi nitrifikasi antara lain (1) kemasaman, nilai pH maksimum berkisar dari 6.6 sampai 8.0. Tingkat nitrifikasi dalam tanah pertanian di bawah pH 6.0 dan menjadi lebih rendah di bawah 4.5. Nilai pH yang tinggi menghambat transformasi NO2- ke NO3-; (2) aerasi, karena O2 merupakan kebutuhan obligat bagi semua spesies, maka aerasi penting bagi nitrifikasi. Difusi O2 ke dalam tanah dan untuk aerasi dikendalikan oleh faktor-faktor seperti struktur dan kelembaban tanah; (3) Kelembaban dan temperatur, kelembaban mempengaruhi regim aerasi dalam tanah. Kadar air tanah berpengaruh dalam produksi NO3-. Kelembaban optimum bervariasi untuk tanah-tanah berbeda, tapi kebanyakan nitrifikasi berlangsung pada kelembaban -0.1 sampai -1 MPa. Reaksi mineralisasi secara umum menghasilkan NH4+  lebih rendah jika dibandingkan saat kekurangan air atau temperatur rendah; NH4+ terakumulasi dalam kadar air rendah atau tanah yang beku. Meskipun nitrifikasi berjalan lambat di bawah 5oC, namun dapat berlangsung pada tanah-tanah yang tertutup salju. Nitrifikasi juga berjalan lambat pada suhu di bawah 40oC. Suhu optimumnya antara 30 dan 35oC. Hubungan antara temperatur, kelembaban, aerasi, dan faktor lainnya membuat efek musim. Di daerah beriklim sedang, nitrifikasi terjadi sangat cepat saat musim semi dan gugur, dan paling lambat terjadi saat musim panas dan dingin.
Faktor-faktor lain yang mempengaruhi proses nitrifikasi adalah waktu tinggal sel rata-rata (mean cell residence time/MCRT), laju hidraulik, tingkat kompetisi dengan bakteri (nitrifikasi) heterotrof, Rasio AOB/NOB, dan konsentrasi senyawa toksik/penghambat proses nitrifikasi seperti aseton, fenol, etilendiamin, kloroform, heksametilendiamin, etanol, seng, tembaga, air raksa, krom, nikel, perak, kobalt, kadmium, dan logam berat lainnya (Magdalena, 2009).   Nitrifikasi tidak hanya berperan dalam ketersediaan N, akan tetapi juga berpotensi mencemari air tanah  lewat pelindian NO3- (nitrat) karena kemampuan tanah menjerap anion pada umumnya kecil dan mencemari tanah oleh NO2-  yang beracun bagi tumbuhan. Untunglah konversi nitrit ke nitrat berlangsung lebih cepat daripada konversi amonia ke nitrit (Notohadiprawiro, 1999).
Nitrifikasi dapat pula menyebabkan kerugian. Amonium merupakan kation, diadsorbsi oleh tanah, dan relatif stasioner. Di sisi lain, nitrat adalah anion yang mobil di dalam larutan tanah. Di bawah kondisi tertentu, khususnya pada tanah berpasir dengan curah hujan tinggi atau irigasi berlebihan dilakukan, NO3- akan tercuci dari daerah perakaran. Hal tersebut juga dapat terjadi akibat kehilangan dalam denitrifikasi. Hal ini dapat mengkontaminasi atmosfer. Pencucian kelebihan NO3- dari tanah seringkali berakhir dalam air bawah tanah, danau, dan sungai. Hal ini dapat berimplikasi pada: (1) kelebihan pertumbuhan tanaman dan alga (eutrofikasi), (2) masalah kesehatan seperti methemoglobin hewan, (3) terbentuknya nitrosamin yang bersifat karsinogen akibat adanya reaksi dengan senyawa nitrogen lainnya. Gas intermediet hasil nitrifikasi merupakan polutan atmosfer (Paul dan Clark, 1996).
Produk samping atau gas intermediet dari reaksi oksidasi amonium dapat berupa gas N2O atau dapat juga digunakan sebagai senyawa nitrogen yang terlibat dalam metabolisme bakteri pengoksidasi amonium setelah diasimilasi oleh sel (Tresnawati, 2006). King dan Nedwell (1985) menjelaskan bahwa produksi N2O meningkat secara proporsional dengan menurunnya konsentrasi amonium karena proses oksidasi.
Bakteri penitrifikasi termasuk ke dalam dua kelompok fisiologi yang berbeda, yang terpenting dari masing-masing kelompok adalah Nitrosomonas yang mengoksidasi amonium menjadi nitrit dan Nitrobacter yang mengoksidasi nitrit menjadi nitrat. Kedua macam bakteri itu berbentuk batang kecil, Gram negatif, tidak membentuk endospora, berflagella polar, dan bersifat aerob obligat (Imas et al., 1989). Nitrosomonas dan Nitrobacter lebih menjadi perhatian karena adanya pendapat yang menginginkan agar proses nitrifikasi ini perlu dikendalikan sehubungan dengan efisiensi pemupukan N dan pengendalian pencemaran lingkungan (Iswandi, 1989).  Bakteri pengoksidasi amonia tergolong Gram negatif yang memiliki bentuk sel batang (panjang 0.6-4 µm), ellipsoid, sferikal, dan spiral. Sel tidak motil dan motil dengan flagella polar sampai subpolar atau peritrik. Semua spesies aktivitasnya berjalan pada kondisi aerobik, temperatur pertumbuhan optimum 25-30oC, tidak aktif pada suhu 4oC dan pH optimum berkisar 7.5-8.0. berkoloni pada media seperti kerikil, pasir, atau media sintetik lain, memerlukan oksigen untuk mengkonversi senyawa anorganik sebagai sumber energinya, dan memerlukan CO2 sebagai sumber karbon. Rasio reproduksi sangat lambat (waktu generasi 20-40 jam) (Holt et al., 1994; Magdalena, 2009).
Bakteri nitrifikasi tumbuh sangat lambat meskipun pada kondisi optimum. Waktu generasinya bergantung pada pH dan bervariasi dari 100 jam pada pH 6.2 sampai 38 jam pada pH 7.6 bagi Nitrosomonas dan dari 58 jam pada pH 6.2 sampai 21 jam pada pH 6.6 atau lebih bagi Nitrobacter. Waktu generasi ini dihitung dari laju pengubahan nitrogen amonium dan nitrogen nitrit dan dengan anggapan bahwa hubungan antara waktu generasi dan hilangnya substrat di dalam tanah itu seperti yang terjadi pada biakan (Imas et al., 1989).  Menurut Alexander (1999), Nitrosomonas dan Nitrobacter tergolong ke dalam bakteri kemoautotrof obligat. Kemoautotrof obligat memerlukan sumber energi yang spesifik, misalnya saja Nitrosomonas membutuhkan amonium sebagai sumber energi dan Nitrobacter memerlukan nitrit. Akan tetapi, menurut laporan, Nitrobacter dapat menggunakan asetat sebagai satu-satunya sumber karbon dan energi, sehingga sebenarnya istilah ‘autotrof fakultatif’ mungkin lebih sesuai (Imas et al., 1989).  

 2.2.1. Bakteri Pengoksidasi Amonium 
Bakteri-bakteri yang tergolong ke dalam bakteri pengoksidasi amonium antara lain bakteri yang berasal dari Genus Nitrosomonas. Bakteri yang tergolong ke dalam Genus Nitrosomonas adalah Nitrosomonas aestuarii, Nitrosomonas communis, Nitrosomonas europaea, Nitrosomonas eutropha, Nitrosomonas halophila, Nitrosomonas marina, Nitrosomonas nitrosa, Nitrosomonas oligotropha, dan Nitrosomonas ureae. Selain dari Genus Nitrosomonas, bakteri pengoksidasi amonium yang lain berasal dari Genus Nitrosococcus (Nitrosococcus briensis, Nitrosococcus oceani), Genus Nitrosospira (Nitrosospira briensis, Nitrosospira multiformis, Nitrosospira tenuis), Genus Nitrosolobus (Nitrosolobus multiformis), dan Genus Nitrosovibrio (Nitrosovibrio tenius) (Magdalena, 2009).  Bakteri-bakteri tersebut menurut Holt et al. (1994) termasuk ke dalam genus bakteri pengoksidasi amonium dan bersifat obligat kemoliautotrof yang membutuhkan energi untuk mengoksidasi amonium atau nitrit menjadi nitrat. Kebutuhan sumber karbon diambil melalui proses fiksasi CO2. Spesies bakteri pengoksidasi amonium ini terdistribusi mulai dari tanah, laut, danau, sungai, dan sistem pembuangan limbah. Nitrosomonas sp. adalah bakteri aerob khemolitotrof obligat yang memperoleh energi dari oksidasi senyawa amonium dan menggunakan CO2 sebagai sumber utama karbon di dalam sintesa biomassanya. Secara morfologis, bakteri ini berbentuk batang pendek, kadang-kadang bentuk sel elips, motil dan non motil, terdapat dalam bentuk konsorsium, berpasangan sebagai rantai pendek maupun sendiri. Bakteri ini adalah bakteri Gram negatif dan memiliki sitomembran. Sel tumbuh bebas pada medium dan membentuk matriks tipis. Bakteri ini dapat tumbuh optimum pada temperatur 5-30oC dan pH optimum 5.8-8.5, serta hidup pada habitat air laut, air tawar, dan tanah (Holt et al., 1994; Hairiyah dan Handayanto, 2007).  Jenis Nitrosococcus sp. bentuk selnya sferik sampai ellipsoidal, Gram negatif, bersifat motil dengan satu atau dua flagella, mampu tumbuh pada suhu sekitar 15-30oC dengan pH 6.5-8.0, dan habitatnya di air tawar atau air laut. Bakteri yang berasal dari Genus Nitrospira sp. bentuk selnya spiral, Gram negatif, mempunyai sitomembran yang tidak merata, kadang-kadang membentuk seperti membran plasma, non motil dan motil dengan menggunakan flagella peritrikus, dan memiliki habitat di air tawar (Holt et al., 1994).

Salah satu bakteri yang berperan dalam mengoksidasi nitrit menjadi nitrat berasal dari genus Nitrobacter. Genus Nitrobacter ini terdiri atas Nitrobacter alakticus, Nitrobacter hamburgensis, Nitrobacter vulgaris, dan Nitrobacter winogradsky. Nitrobacter sp. diketahui dapat mengoksidasi nitrit oksida (NO) menjadi nitrat (NO3-), kebutuhan sumber karbon diambil melalui proses fiksasi CO2. Habitat kelompok bakteri ini tersebar pada air tawar, air laut, serta tanah. Jenis Nitrobacter sp. selnya berbentuk batang pendek, pleomorfik, seringkali berbentuk pears, Gram negatif, dan biasanya non motil (Holt et al., 1994).  Selain genus Nitrobacter, genus lain yang mampu mengoksidasi nitrit adalah genus Nitrococcus (Nitrococcus mobilis merupakan satu-satunya spesies yang termasuk Nitrococcus yang dijumpai hanya di perairan laut), genus Nitrospina (Nitrospina gracilis), dan Nitrospira (Magdalena, 2009).  Oleh karena Nitrobacter adalah bakteri autotrof maka proses nitrifikasi hanya berlangsung bila ada oksigen. Makin tinggi kadar oksigen makin tinggi pula laju proses nitrifikasi. Pada suasana anaerob proses ini akan terhambat. Pada pH yang terlalu tinggi (pH 7.5-8.0) aktivitas bakteri Nitrobacter berkurang sehingga terjadi penumpukan NO2- karena konversi ke NO3- tertekan. Tetapi sebaliknya pada pH 7.0 kecepatan konversi NO2- ke NO3- melebihi kecepatan konversi NH4+ ke NO3- (Leiwakabessy et al., 2003).  Jenis Nitrospina sp. bentuk selnya batang panjang, Gram negatif, bersifat non motil, memiliki habitat di air laut, dan tumbuh baik pada kondisi lingkungan yang mengandung senyawa organik. Suhu optimum untuk pertumbuhannya berkisar 25-30 oC dan pH 7.5-8.0 (Holt et al., 1994).


CATATAN PENTING DARI CV.MARROS LESTARI
Hasil penelitian ini telah diujicobakan dengan sukses pada air limbah 
sebuah pabrik kimia di daerah Cileungsi, Kab. Bogor.


Senin, 09 Mei 2011

APPLIKASI PRODUK CV.MARROS LESTARI


Sejak sebelum menjadi sebuah usaha berbadan hukum,
produk-produk yang kami formulasikan sudah diapplikasi
di banyak tempat di Indonesia.



PROJECT : REKLAMASI DAN REVEGETASI LAHAN BEKAS TAMBANG

By : Marindo Palar Vinkoert

Project : Pemebentukkan Top Soil dan Pemupukan Tanaman Perintis
Lokasi : Lahan Bekas Tambang
(undisclosure, sorry ini perjanjian kerja sama)
Tahun : 2009 - undetermined (Jangka Panjang)
Luas : Tahap-1, 5000 Ha (2 tahun), Tahap-2, 12000 Ha (4 tahu)

Produk : MORGANIK-SR, MORGANIK-Reguler, Produk Khusus Pupuk Anorganik NPK6
MORGANIK-SR adalah Pupuk Organik Curah  dan MORGANIK Reguler adalah Pupuk Organik Granul

Kerusakan Parah Lahan Bekas Tambang

PENDAHULUAN
Para pengusaha pertambangan dikenai kewajiban untuk memulihkan kembali lahan bekas tambangya dengan melakukan penanaman tumbuhan asli. Banyak peraturan perundang-undangan yang mengatur kewajiban reklamasi lhan bekas tambang ini.
Pada pertengan tahun 2009, CV.MARROS LESTARI ditantang oleh sebuah perusahaan pertambangan untuk memformulasikan bahan pembentuk top soil dan pupuk yang sesuai untuk tanaman revegetasi di lahan bekas tambangnya. Setelah beerapa kali pertemuan, kerjasama itu dituangkan dalam sebuah perjanjian kerja yang mengikat kedua belah pihak. Perjanjian itu mencakup : (1). Pengadaan Bahan Pembantu Pembentukan Top Soil, (2). Pengadaan Pupuk untuk pembibitan dan penanaman, (3). Perancangan Laboratorium Mikrobiologi dan Kultur Jaringan.

PROJECT SCHEDULE


ANALISA CONTOH TANAH
Apabila dibandingkan dengan Kriteria Kesuburan Tanah, maka, hasil analisa kimia tanah di daerah pertambangan tersebut, tergolong KESUBURAN SANGAT RENDAH. Hal ini didukung kuat oleh hasil analisa mikroorganisme tanah tersebut, yang menunjukkan tidak adanya Bakteri Penambat Nitrogen dan Pelarut Kalium, dan sangat rendahnya Bakteri Pelarut Phospat.
Sebelum Direklamasi dan Revegetasi


Meskipun pada analisa tanah tersebut tidak dilakukan pengukuran C-organik, tapi dari hasil pengukuran Mikroorganisme, dapat disimpulkan bahwa C-organik di tanah bekas tambang tersebut TIDAK ADA, karena bakteri tidak bisa hidup bila tidak ada bahan organik dalam tanah tempat mereka hidup.
Nursery Pembibitan Tanaman Asli


REKOMENDASI
Dalam pelaksanaan pekerjaan ini, terjadi beberapa perubahan dari proposal, berdasarkan permintaan pihak perusahaan pertambangan ybs. Perubahan menyangkut pengadaan Laboratorium Mikrobiologi dan Kultur jaringan, yang ditunda. Ini mengakibatkan proses pembiakan bakteri dan produksi bibit kultur jaringan tidak bisa dilakukan di lokasi. Pembibitan di lakukan di Nursery milik perusahaan, dengan petunjuk "jarak jauh" dari CV.MARROS LESTARI (maksudnya, lewat email saja...., gitu...)

Berdasarkan gambar yang di tangkap dari rekaman video terhadap kondisi tanaman di lokasi pembibitan dan lokasi penanaman tanaman perintis, dapat dilihat bahwa tanaman di kedua lokasi tersebut belum tumbuh secara optimal. Sedangkan berdasarkan hasil evaluasi kimia dan mikrobiologi tanah, disimpulkan bahwa tanah di lokasi pertambangan tergolong tanah dengan KESUBURAN SANGAT RENDAH, maka, DIREKOMENDASIKAN beberapa hal, sebagai berikut :

1. JARAK TANAM
Dari beberapa rekaman yang dilakukan terhadap penanaman tanaman perintis, kelihatan jarak tanam yang jarang. Disarankan agar jarak tanam tanaman perintis, dilakukan dengan jarak tanam yang lebih rapat, terutama di lereng, karena akar tanaman dapat memperbaiki sistim drainase tanah di lereng tersebut.

Jarak tanam terlalu lebar

2. JARING PENGAMAN.
Agar lahan dasar sebelum diapplikasikan pupuk dan ditanam tanaman dibuat sistim penahan dasar tananam seperti jaring atau jala dengan menggunakan coconet. Sistim penahan dasar tanaman ini membuat pupuk pemebenah tanah MORGANIK-SR dan pupuk dasar MORGANIK-Reguler yang diapplikasikan tidak akan terbuang dan terangkut oleh kondisi alam seperti hujan dan akan memberikan kenyamanan untuk tanaman tumbuh dengan optimal.

3. PENINGKATAN KESUBURAN LAHAN BEKAS TAMBANG
Mengingat lahan bekas tabang yag akan direklamasi, merupakan lahan dengan tingkat Kesuburan Sangat Rendah, maka perlu ditingkatkan sampai mencapai lahan dengan tingkat Kesuburan Tinggi. Sesuai dengan persyaratan Lahan Kesuburan Tinggi, maka lahan tersebut harus mengandug C-organik (rata-rata) 4%. Dan, agar akar tanaman perintis dapat tumbuh dengan baik, di perlukan Top Soil dengan ketebalan minimum 10 cm. Rasio MORGANIK-SR dan Top Soil dengan ketebalan top soil 10 cm adalah 1 : 5.5 dengan kata lain, tambahkan 1 Ton M-SR untuk setiap 5.5 Ton Top Soil.
Pembentukan Top Soil dengan Hydro Truck
4. DOSIS DAN CARA PEMUPUKAN

MORGANIK-SR juga dapat di gunakan sebagai pupuk bagi tanaman, disamping MORGANIK-Reguler. Berikan MORGANIK-SR dan MORGANIK-Reguler sesuai degan dosis berikut ini :

APPLIKASI MORGANIK-SR
1. Untuk pemakaian dalam Cocopot/Polybag/Pot :
Campurkan MORGANIK-SR 1 : 1 dengan media tanam yang lain. Misalnya,
Cocopot mempunyai kapasitas 2 kg, maka banyak MSR yang dimasukkan
1kg dan 1kg yang lain bisa campuran media lain (seperti tanah,
vermicompos, dll).
2. Apabila akan di applikasikan sebagai pupuk pada tanaman perintis,
MSR tidak bisa ditabur, tapi harus ditanam didalam tanah sekitar
perakaran tanaman dengan kedalaman antara 5 - 10 cm, tutup dengan tanah
dan siram air.
Jumlah MSR untuk tanaman :
(a). 1 kg untuk tanaman berumur 1-6 bulan,
(b). 1.5 kg untuk tanaman berumur 1 tahun,
(c). 3 kg untuk tanaman berumur 3 tahun keatas.
Untuk hasil yang optimum pemberian MSR diulang sekali dalam 3 bulan.

APPLIKASI MORGANIK-Reguler

1. Untuk pemakaian dalam Cocopot/Polybag/Pot :
Campurkan Media Tanam Lain dan MOGANIK-Reg dengan perbandingan 1:3.
Misalnya, untuk Cocopot kapasitas 2 kg, maka jumlah media lain 1/2 Kg
dan MOR-Reg 1,5 kg. Untuk pemakaian terhadapa tanaman, bisa ditabur
atau ditanam.
Jika ditabur cukup diletakkan diatas piringan tanaman.
Jika ditanam, MOR-Reg dimasukkan didalam tanah sekitar perakaran
tanaman dengan kedalaman sekitar 5 - 10 cm, tutup dengan tanah dan
siram air.
Jumlah MOR-Reg yang diaplikasi pada tanaman :
(a). 1 kg untuk tanaman berumur 1-6 bulan,
(b). 2 kg untuk tanaman berumur 1 tahun,
(c). 5 kg untuk tanaman berumur 3 tahun keatas.
Untuk hasil yang optimum pemberian MORGANIK-Reguler diulang sekali
dalam 6 bulan.

2. Untuk pemakaian dilapangan sebagai penganti Topsoil, sebanyak
15 ton / Ha, dengan cara ditabur, kemudian siram dengan air pagi
dan sore.

Tumbuhlah dengan subur, Hijaumu sudah terlihat

APPLIKASI PUPUK NPK-6

KETERANGAN UMUM
Pupuk ini merupakan hal yang baru dari Project ini. Sebelum nya tidak ada dalam proposal. Karena itu disarankan, agar NPK-6 sebaiknya di-applikasi-kan sebagai pupuk lanjutan setelah tanaman tumbuh di media campuran MORGANIK-SR dan MORGANIK-Reguler atau setelah tanaman tumbuh di media lain.

PEMAKAIAN :
1. Untuk applikasi pada tanaman dalam Cocopot/Polybag/Pot ukuran
2 kg:
• Benamkan NPK-6 sebanyak 250 gram disekeliling tanaman dengan
kedalaman antara 5 - 10 Cm.
• Setelah itu tmbun dengan tanah dan siram dengan air.

2. Untuk applikasi langsung pada tanaman, dibenamkan dengan kedalaman
10 cm disekitar perakaran dengan dosis NPK-6 per tanaman :
(a). 1/2 kg untuk tanaman berumur 1-6 bulan,
(b). 1 kg untuk tanaman berumur 1 tahun,
(c). 2 kg untuk tanaman berumur 3 tahun keatas.
Untuk hasil yang optimum pemberian NPK-6 diulang sekali dalam
4 bulan.

Semoga Area ini bisa segera kami hijaukan kembali....

Proyek ini akan terus berlanjut, sampai seluruh area tersebut menjadi hijau kembali, insyaAllah......

Sabtu, 07 Mei 2011

SURVEY KESUBURAN LAHAN UNTUK KEBUN JAGUNG

By :
Drs. Marindo Palar, MM
Dra. Rosmimi Emerde Palar, MSi


PENDAHULUAN
Salah seorang client CV.MARROS LESTARI, 2 tahun yang lalu membeli lahan seluas 9 Ha di daerah Cicurug, Sukabumi. Lahan ini, katanya selama bertahun2 ditanami singkong, oleh penduduk setempat. Client kami akan menggunakan lahan tersebut untuk menanm Jagung.Untuk itu dia minta CV.MARROS LESTARI utuk melakukan survey kesuburan lahan dan rekomendasi pembenahan tanah dan pemupukan.

SAMPLING
Survey dilakukan dengan mengambil sample tanah di lokasi. Untuk setiap lebih kurang 2 Ha lahan, diambil 5 sampel pada titik-titik tertentu, lalu digabung menjadi 1 sampel.  Total sampel gabungan 5 sampel. Terhadap sampel-sampel ini dilakukan analisa C-organik, hara primer NPK dan mikroba tanah, untuk penambat Nitrogen dan pelarut Phosphat dan Kalium.

SURVEY

Pengukuran C-organik Tanah
Tingkat kesuburan lahan diukur berdasarkan kandunga C-organik dari 5 sampel. C-organik sendiri diukur dengan metoda Walkley-Black, sebagai berikut :

a.  Prinsip
    C-organik dalam tanah terlebih dahulu dioksidasikan dengan kalium
    bikromat, kemudian  didesktruksi dengan asam sulfat pekat dan 
    asam fosfat. Besarnya C yang hilang karena teroksidasi merupakan
    kadar C dalam tanah.

b.  Alat-alat :
     • Timbangan analitik / digital
     • Labu erlenmeyer 500 ml
     • Buret
     • Pengaduk magnetik (magnetik stirer)
     • Pipet 10 ml
     • Gelas ukur
     • Labu volumetrik (labu takar) 1 L.

c. Bahan pereaksi :
    • Asam sulfat pekat (H2SO4, 96%)
    • Asam fosfat pekat (H3PO4, 85%)
    • Kalium bikromat 1 N.
       Ditimbang 49.04 g K2Cr2O7, kemudian dilarutkan dengan 
       aqudest dalam baker glass 500 ml. Diaduk perlahan-lahan, 
      kemudian dituangkan ke dalam labu volumetrik (labu takar)
     1 L dan ditambahkan aquadest sampai tanda garis.
   • Indikator difenilamin
          Ditimbangkan 0.5 g difenilamin (p. a.) dan dilarutkan dalam 20 ml
          aquadest, kemudian  ditambahkan 100 ml H2SO4pekat.
   • Larutan ferosulfat 0.5 N.
          Dilarutkan 278 g FeSO4 dengan aquadest dalamgelas piala 500 ml.
          Ditambahakan 15 ml H2SO4 dan diaduk perlahan-lahandengan 
         pengaduk kaca, setelah itu di encerkan menjadi 1 L dalam labu
         volumetrik


d.  Cara kerja :
     · Timbang 0.01 g contoh tanah, dimasukkan ke dalam labu erlenmeyer 500 ml.
     · Pipet 10 ml larutan K2Cr2O7 1 N dimasukkan ke dalam labu erlenmeyer tersebut.
     · Tambahkan 20 ml H2SO4 pekat dengan menggunakan gelas ukur, digoyangkan
       perlahan-lahan dan hati-hati jangan sampai contoh tanah melekat di dinding gelas.
     · Kerjakan prosedur nomor 1 sampai nomor 3 untuk blanko (tanpa contoh tanah).
     · Selanjutnya ditambah 200 ml aquadest dan ditambahkan 10 ml H3PO4 pekat dan 30
       tetes indikator difenilamin.
     · Larutan ini selanjutnya dititrasi dengan FeSO4 0.5 N sampai terjadi perubahan
       warna mula-mula dari hijau gelap menjadi biru keruh, dan menjadi hijau terang
       pada titik akhir titrasi.

e.  Perhitungan :
     Kadar karbon dalam tanah :
              % C = {(V1-V2)/S} x N x 0.39
             Dimana :
                   V1 = volume FeSO4 yang terpakai
                            untuk titrasi blanko
                   V2 = volume FeSO4 yang terpakai
                            untuk titrasi contoh
                     S = bobot contoh kering oven
                           105oC dalam gram
                     N = normalitas FeSO4 (misalnya : 0.5 )
                0.39 = 3 x 10-3 x 100% x 1.3 (3=bobot ekivalen karbon)
           Catatan :
                Faktor 1.3 adalah faktor kompensasi untuk pembakaran bahan organik
                yang tidak  sempurna.

Selanjut nya, Nitrogen diukur dengan Metoda Kjedahl,sedangkan P dan K ditentukan secara spektrofotometrik.

HASIL  SURVEY

Jenis Tanah    : Inceptisol
Tesktur Tanah : Claylum (Lempung berliat)
pH Tanah      : Cenderung masam (Rata-rata < 6)
Hasil Analisa


KESIMPULAN
Lahan seluas 9 Ha tersebut merupakan lahan miskin, dan sedikit masam

PROPOSAL PEMBENAH TANAH DAN PEMUPUKAN

Untuk menjadikan lahan tersebut tergolong lahan subur, maka direkomendasikan untuk diperlakukan dengan pupuk pempenah tanah yang akan kami formulasi khusus, yaitu MORGNATA NPK2-C16, dengan dosis sebanyak 2,6 Ton/Ha. JANGAN DITABUR. Siram dengan air pagi dan sore.

Setelah 2 minggu, tanam bibit, beri MORGENTA NPK2-C16, sebagai pupuk dasar, sebanyak 150 gram/tanaman. Pemberian pada kedalaman antara 5-10 cm di pokok tanaman, lalu tutup dengan tanah.

Untuk pemupukan lanjutan, kami formulasikan pupuk semi organik, MORGENTA-NPK5-C12.
Gunakan pupuk ini sebanyak 200 gr/tanaman, pada saat tanaman mulai mengeluarkan malai.